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當(dāng)前位置:首頁產(chǎn)品中心生化檢測試劑盒-微量法微量法生化試劑盒BC5255-100T/48S超氧化物歧化酶分型活性檢測試劑盒 微量法

超氧化物歧化酶分型活性檢測試劑盒 微量法
產(chǎn)品簡介:

超氧化物歧化酶分型活性檢測試劑盒 微量法
儲存條件
2-8℃
有效期
6個月
單位

英文名稱
Superoxide Dismutase (SOD) Typed Activity Assay Kit (WST colorimetry)
檢測方法
微量法 Spectrophotometer/Microplate Reader
規(guī)格
100T/48S

產(chǎn)品型號:BC5255-100T/48S

更新時間:2024-04-19

廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家

訪 問 量 :946

服務(wù)熱線

010-50973130

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產(chǎn)品介紹

超氧化物歧化酶(SOD)分型活性檢測試劑盒(WST法)說明書

Cu-ZnMn、總SOD活性

微量法

注意:本產(chǎn)品試劑有所變動,請注意并嚴(yán)格按照該說明書操

貨號:BC5255

規(guī)格:100T/48S

產(chǎn)品組成:使用前請認(rèn)真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。

試劑名稱

規(guī)格

保存條件

提取液一

液體110 mL×1

2-8℃保存

提取液二

液體18 mL×1

2-8℃保存

試劑一

液體10 mL×1

2-8℃保存

試劑二

液體50 μL×1

2-8℃保存

試劑三

液體8 mL×1

2-8℃保存

試劑四

液體0.5 mL×1

2-8℃保存

溶液的配制:

1、 試劑二:使用前先使用掌上離心機(jī)離心至管底再吹打混勻;

2、 試劑二工作液:根據(jù)樣本數(shù)量按試劑二:蒸餾水=5μL245μL(共250μL,可做12Cu-Zn-SOD樣本或6Mn-SOD樣本)的比例配制試劑二工作液,現(xiàn)用現(xiàn)配;

3、 試劑四工作液:根據(jù)樣本量按試劑四蒸餾水=20μL180μL(共200μL,約20T)的比例配制試劑四工作液,現(xiàn)用現(xiàn)配。

產(chǎn)品說明:

SODEC 1.15.1.1)廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細(xì)胞中,根據(jù)其輔基結(jié)合金屬離子的不同,可分為銅鋅SOD、錳SOD等類型,銅鋅SOD主要位于細(xì)胞質(zhì),錳SOD主要位于線粒體。SOD催化超氧化物陰離子發(fā)生歧化作用,生成H2O2O2。SOD不僅是超氧化物陰離子清除酶,也是H2O2主要生成酶,在生物抗氧化系統(tǒng)中具有重要作用。

通過黃*呤及黃*呤氧化酶反應(yīng)系統(tǒng)產(chǎn)生超氧陰離子(O2-)O2-可與WST-1反應(yīng)生成水溶性黃色甲臜,后者在450nm處有吸收峰;SOD可清除O2-,從而抑制了甲臜的形成;反應(yīng)液黃色越深,說明SOD活性愈低,反之活性越高。樣本經(jīng)過處理后銅鋅SOD活性不變,錳SOD活性喪失。通過測定總SOD活性和銅鋅SOD活性,可計算得到錳SOD活性。

注意:實驗之前建議選擇2-3個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進(jìn)行檢測。

需自備的儀器和用品:

 

可見分光光度計/酶標(biāo)儀、臺式離心機(jī)、漩渦混勻儀/振蕩器、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、電子天平、可調(diào)式移液器、微量玻璃比色皿/96孔板、研缽/勻漿器/細(xì)胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。

操作步驟:

一、樣本處理

1. SOD活性測定

1) 細(xì)菌或培養(yǎng)細(xì)胞樣本:收集細(xì)菌或細(xì)胞到離心管內(nèi),離心后棄上清,按照細(xì)菌或細(xì)胞數(shù)量(104個):提取液一體積(mL=500-1000:1的比例(建議500萬細(xì)菌或細(xì)胞加入1mL提取液一)超聲波破碎細(xì)菌或細(xì)胞(冰浴,功率200W,超聲3s,間隔10s,重復(fù)30次),8000g 4℃離心10min,取全部上清,部分用于測定總SOD活性。

2) 組織樣本:按照組織質(zhì)量(g):提取液一體積(mL)為1:5-10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液一)進(jìn)行冰浴勻漿;8000g 4℃離心10min,取全部上清,部分用于測定總SOD活性。

3) 血清(漿)樣本:直接用于測定總SOD活性,若有渾濁可離心后取上清進(jìn)行測定。

2. 銅鋅SOD活性測定

1) 取上一步提取得到的上清,按照上清體積(mL):提取液二體積(mL=2:3的比例(建議取0.2mL上清加入0.3mL提取液二)混合,震蕩混勻1min,4000g 4℃離心10min,取最上層的上清用于測定銅鋅SOD活性,此上清即樣本處理上清,上清中銅鋅SOD活性不變,錳SOD活性喪失。

    注:混合液離心后分為3層,取最上層溶液測定即可。

2) 按照蒸餾水體積(mL):提取液二體積(mL=2:3的比例(建議取0.2mL蒸餾水加入0.3mL提取液二)混合,震蕩混勻1min,4000g 4℃離心10min,取最上層的上清用于測定銅鋅SOD活性的空白管,此上清即蒸餾水處理上清

二、測定步驟

1. 可見分光光度計/酶標(biāo)儀預(yù)熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至450nm,分光光度計蒸餾水調(diào)零。

2. 測定前將試劑一、試劑三和試劑工作液37℃水浴5min以上。

3. 加樣表(按順序在EP管或96孔板中加入下列試劑)

試劑名稱(μL

SOD活性

銅鋅SOD活性

測定管1

對照管1

空白管1

空白管2

測定管2

對照管2

空白管3

空白管4

20

20

-

-

-

-

-

-

樣本處理上清

-

-

-

-

20

20

-

-

蒸餾水處理上清

-

-

-

-

-

-

20

20

試劑一

45

45

45

45

45

45

45

45

試劑二工作液

20

-

20

-

20

-

20

-

試劑三

35

35

35

35

35

35

35

35

蒸餾水

70

90

90

110

70

90

70

90

試劑四工作液

10

10

10

10

10

10

10

10

充分混勻,37水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱反應(yīng)30min后,置于微量玻璃比色皿/96孔板測定450nm下的吸光度,空白管1、空白管2、空白管3和空白管4只需做1-2次,每個樣本測定管需設(shè)置一個對照管。

SOD的記為A1測定、A1對照、A1空白、A2空白,計算ΔA1測定=A1測定-A1對照,ΔA1空白=A1空白-A2空白。

 

銅鋅SOD的記為A2測定、A2對照、A3空白、A4空白,計算ΔA2測定=A2測定-A2對照,ΔA3空白=A3空白-A4空白。

三、SOD活性計算

1、抑制百分率的計算

SOD抑制百分率=(ΔA1空白-ΔA1測定) ÷ΔA1空白×100%

銅鋅SOD抑制百分率=(ΔA3空白-ΔA2測定) ÷ΔA3空白×100%

盡量使樣本的抑制百分率在30-70%范圍內(nèi),越靠近50%越準(zhǔn)確。如果計算出來的抑制百分率小于30%或大于70%,則通常需要調(diào)整加樣量后重新測定。如果測定出來的抑制百分率偏高,則需適當(dāng)稀釋樣本;如果測定出來的抑制百分率偏低,則需重新準(zhǔn)備濃度比較高的待測樣本或者提高加樣表中的樣本量,但需相應(yīng)減少測定管和對照管中蒸餾水的體積。注意同步修改計算公式。

2、SOD酶活性單位:在上述黃*呤氧化酶偶聯(lián)反應(yīng)體系中抑制百分率為50%時,反應(yīng)體系中的SOD酶活力定義為一個酶活力單位。

3SOD酶活性計算:

1)血清(漿)SOD活性(U/mL=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總] ÷V×F

=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ×F

2)組織、細(xì)菌或培養(yǎng)細(xì)胞SOD活力計算:

A按樣本蛋白濃度計算

SOD活性(U/mg prot=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總] ÷(V×Cpr)×F

=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷Cpr×F

B按樣本質(zhì)量計算

SOD活性(U/g 質(zhì)量)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總] ÷(W×V÷V樣總)×F

=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F

C按細(xì)菌或細(xì)胞數(shù)量計算

SOD 活力(U/104 cell=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總] ÷(500×V÷V樣總)×F

=0.02×抑制百分率÷(1-抑制百分率)×F

3SOD活性=SOD活性-銅鋅SOD活性

V反總:反應(yīng)總體積,0.2mL;V樣:加入反應(yīng)體系中的樣本體積,0.02mL;V樣總:加入提取液體積,1mLCpr:蛋白樣本濃度,mg/mL;W:樣本質(zhì)量,g;500:細(xì)胞或細(xì)菌總數(shù),500萬;F:樣本稀釋倍數(shù)。

注意事項:

1、 樣本和試劑二工作液使用時在冰上放置。

2、 樣本較多時,可按表格配制測定管工作液和對照管工作液(包含試劑一、(試劑二工作液)、試劑三、蒸餾水),試劑四工作液必須最后加入。

3、 本試劑盒可做48個錳-SOD樣本或者96個銅鋅-SOD樣本。

實驗實例:

1、 0.106g黃楊葉片加入1mL提取液一進(jìn)行勻漿研磨,取上清稀釋10倍,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算ΔA1測定= A1測定-A1對照=0.399-0.088=0.311ΔA1空白=A1空白-A2空白=0.801-0.088=0.713,總SOD

 

2、 抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=56.381%;取0.2mL稀釋10倍的上清,加入0.3mL提取液二,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算ΔA2測定= A2測定-A2對照=0.827-0.086=0.741,ΔA3空白=A3空白-A4空白=1.011-0.081=0.930,銅鋅SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=20.323%,按樣本質(zhì)量計算酶活得:

SOD活性U/g 質(zhì)量)=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =1219.438 U/g 質(zhì)量

銅鋅SOD活性U/g 質(zhì)量)=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =240.623 U/g 質(zhì)量

SOD活性U/g 質(zhì)量)=1219.438-240.623 =978.815 U/g 質(zhì)量

3、 0.1104g兔脾臟加入1mL提取液一進(jìn)行勻漿研磨,取上清稀釋10倍,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算ΔA1測定= A1測定-A1對照=0.348-0.088=0.260,ΔA1空白=A1空白-A2空白=0.801-0.088=0.713,總SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=63.534%;取0.2mL稀釋10倍的上清,加入0.3mL提取液二,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算ΔA2測定= A2測定-A2對照=0.637-0.084=0.553,ΔA3空白=A3空白-A4空白=1.011-0.081=0.930,銅鋅SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=40.538%按樣本質(zhì)量計算酶活得:

SOD活性U/g 質(zhì)量)=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =1578.177 U/g 質(zhì)量

銅鋅SOD活性U/g 質(zhì)量)=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =617.514 U/g 質(zhì)量

SOD活性U/g 質(zhì)量)=1578.177-617.514 =960.663 U/g 質(zhì)量

4、 1000萬細(xì)胞加入1mL提取液一進(jìn)行前處理并按測定步驟操作,反應(yīng)體系中樣本量加倍,用96孔板測得計算ΔA1測定= A1測定-A1對照=0.336-0.124=0.212,ΔA1空白=A1空白-A2空白=0.714-0.086=0.628,總SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=66.242%;取0.2mL上清,加入0.3mL提取液二,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算ΔA2測定= A2測定-A2對照=0.525-0.085=0.440ΔA3空白=A3空白-A4空白=0.982-0.081=0.901,銅鋅SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=51.165%,修改計算公式后按細(xì)胞數(shù)量計算酶活得:

SOD活性U/104 cell=0.005×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ×F =0.010 U/104 cell

銅鋅SOD活性U/104 cell=0.005×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ×F =0.005 U/104 cell

SOD活性U/104 cell=0.010-0.005=0.005 U/104 cell

參考文獻(xiàn):

[1] Peskin A V, Winterbourn C C. A microtiter plate assay for superoxide dismutase using a water-soluble tetrazolium salt (WST-1) [J]. Clinica chimica acta, 2000, 293(1-2):157-166.

[2] Hou Z, Zhao L, Wang Y, et al. Purification and characterization of superoxide dismutases from sea buckthorn and chestnut rose[J]. Journal of food science, 2019, 84(4): 746-753.

[3] Cristiana, F. , Elena, A. and Nina, Z. Superoxide Dismutase: Therapeutic Targets in SOD Related Pathology[J]. Health, 2014, 06(10):975-988.

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